慢病毒包装试剂盒
- OLIGOBIO-012
- 北京欧林格
- 北京市
- 现货
- 按需定制
- 议价
- 2022-12-14 16:12:13
北京欧林格生物科技有限公司
一键申请试用
咨询
加入意向单
联系方式
产品简介
欧林格生物慢病毒包装试剂盒,对包装系统进行了优化,增加了我司特有的慢病毒出毒增强液。相同的包装量,相比较实验室常规的包装体系能增加3-10倍的出毒量,让您的病毒包装简单快捷,让初学者也能快速包装高滴度的慢病毒。试剂盒的组分包含包装质粒、转染试剂、慢病毒出毒增强剂等。适用于基因过表达和干扰慢病毒的包装,以及后续稳定细胞株的构建。
客户只需构建骨架质粒,和试剂盒中的包装质粒Easy Mix按1:1混合,用LipoX Transfection Reagent将混合后的质粒转染293T细胞,8h就能看到荧光,48h就能收获高滴度的慢病毒,利用慢病毒浓缩液或者超滤柱能快速浓缩纯化病毒,为后续的感染实验提供高纯度高滴度的病毒。
货号
|
规 格
|
价格
|
运输
|
货号OGL-LV-10T
|
10个10cm 皿
|
2000元
|
冰袋
|
货号OGL-LV-20T
|
20个10cm 皿
|
3200元
|
冰袋
|
产品组分
组分名称
|
储存
|
产品编号/规格
|
|
10T
|
20T
|
||
Easy Mix
|
-20℃
|
75μl
|
150μl
|
LipoX Transfection Reagent
|
4℃
|
375ul
|
750ul
|
EGFP对照质粒(Amp+)
|
-20℃
|
50μg
|
100μg
|
出毒增强剂(33X)
|
4℃
|
10ml
|
20ml
|
运输与保存方法
冰袋运输。组分均于-20℃保存(注意:转染试剂 LipoX 需4℃保存)
质粒准备
慢病毒骨架质粒构建与大提:构建含目的基因或shRNA的骨架质粒,并进行大提获得足够质量的无内毒素质粒,且所提质粒DNA 的A260/A280在1.8~2.0之间,浓度大于0.8μg/μl。
冰袋运输。组分均于-20℃保存(注意:转染试剂 LipoX 需4℃保存)
质粒准备
慢病毒骨架质粒构建与大提:构建含目的基因或shRNA的骨架质粒,并进行大提获得足够质量的无内毒素质粒,且所提质粒DNA 的A260/A280在1.8~2.0之间,浓度大于0.8μg/μl。
细胞状态:选择状态良好的293T细胞进行病毒包装,尽量选择低代数细胞。
实验流程
1)293T细胞准备:转染前一天,将已经状态良好的293T细胞以合适比例接种到10cm培养皿中,当细胞长到80%左右时准备转染;
2)转染:转染前视细胞状态和密度决定是否提前换液。取两个无酶无菌的1.5ml EP管,在A、B管中先都加入500μl Opti-MEM,然后再分别加入质粒和转染试剂,详细内容参考下表:
1)293T细胞准备:转染前一天,将已经状态良好的293T细胞以合适比例接种到10cm培养皿中,当细胞长到80%左右时准备转染;
2)转染:转染前视细胞状态和密度决定是否提前换液。取两个无酶无菌的1.5ml EP管,在A、B管中先都加入500μl Opti-MEM,然后再分别加入质粒和转染试剂,详细内容参考下表:
组分
|
体积
|
Opti-MEM(A管)
|
500μl
|
骨架质粒DNA+Easy Mix(A管)
|
7.5μg+7.5μl(7.5μg)
|
Opti-MEM(B管)
|
500μl
|
LipoX(B管)
|
37.5μl
|
将B管转染试剂混合液加到A管中,轻轻混匀后,室温放置15min~20min后,再将AB管混合液加到细胞中摇匀然后加入出毒增强剂300ul(10ml体积加300ul),置于CO2培养箱继续培养;
3)换液:转染过液后,小心弃掉细胞上清(注意收集上清后需要灭菌处理),然后加入10ml新鲜的培养基继续培养;
4)病毒收集:换液36-48h后,吸取细胞上清液于50ml离心管,4℃保存,再重新加入10ml新鲜的培养基,24h后再收集一次细胞上清于第一次的离心管中;
5)病毒处理:4℃,4000rpm离心10min收集上清液,并用用0.45μm滤器过滤后转移到新的离心管中。对病毒进行分装保存,可以直接用于下游实验。如果对病毒的滴度及纯度有较高要求,可用本公司的慢病毒浓缩液(OGL–CELL002)对病毒原液进行浓缩与纯化。也可以使用超滤管超滤实现病毒的浓缩;
6)病毒浓缩:使用本公司的慢病毒浓缩液(OGL–CELL002)进行病毒的浓缩,按病毒原液的1/4体积加入病毒浓缩液,混匀后4℃过夜(每20~30min混合一次,共进行3-5次)。第二天,4℃,4000rpm,离心 20min,吸弃上清后静置管子1~2分钟,吸走残余液体,再加入适量的PBS或培养基溶解慢病毒沉淀;超滤选择100KD大小的超滤管,4000-6000rpm,4℃离心。
3)换液:转染过液后,小心弃掉细胞上清(注意收集上清后需要灭菌处理),然后加入10ml新鲜的培养基继续培养;
4)病毒收集:换液36-48h后,吸取细胞上清液于50ml离心管,4℃保存,再重新加入10ml新鲜的培养基,24h后再收集一次细胞上清于第一次的离心管中;
5)病毒处理:4℃,4000rpm离心10min收集上清液,并用用0.45μm滤器过滤后转移到新的离心管中。对病毒进行分装保存,可以直接用于下游实验。如果对病毒的滴度及纯度有较高要求,可用本公司的慢病毒浓缩液(OGL–CELL002)对病毒原液进行浓缩与纯化。也可以使用超滤管超滤实现病毒的浓缩;
6)病毒浓缩:使用本公司的慢病毒浓缩液(OGL–CELL002)进行病毒的浓缩,按病毒原液的1/4体积加入病毒浓缩液,混匀后4℃过夜(每20~30min混合一次,共进行3-5次)。第二天,4℃,4000rpm,离心 20min,吸弃上清后静置管子1~2分钟,吸走残余液体,再加入适量的PBS或培养基溶解慢病毒沉淀;超滤选择100KD大小的超滤管,4000-6000rpm,4℃离心。
7)病毒分装与保存:将病毒原液或浓缩液按合适体积进行分装,再保存于-80℃。
注意事项
注意事项
1、构建稳定细胞株时,可用病毒感染增强剂和嘌呤霉素对细胞进行感染和筛选。
2、为了您的健康,实验操作过程尽量在生物安全柜中完成,并做好个人防护,请穿实验服和带一次性手套。所有实验废弃物均需要进行灭菌处理。
3、小量病毒包装时,也可以使用小提质粒。转染时如无opti-MEM,可以用PBS、生理盐水或无血清DMEM代替。
4、在慢病毒包装过程中使用opti-MEM培养基,将出毒增强剂按照比例((10ml体积加300ul)加入opti-MEM培养基培养细胞,会获得更好的出毒效果。