研究揭示细胞核的力学变形会影响染色质组织形式并诱导更开放的染色质结构

  细胞重编程技术可用于获得研究或临床所需的目的细胞类型，在再生医学、疾病模型构建和药物筛选中具有广泛的应用。相较于经典的多潜能干细胞（iPSCs）重编程技术，直接重编程通过规避干细胞耗时的分化过程，能够直接将一种成体细胞转化为另一种所需的功能细胞类型，例如将成纤维细胞转化为诱导神经元（iN）细胞。然而，这些转换过程的低效率为生物医学应用带来了障碍。细胞直接重编程的一个关键步骤是克服异染色质的表观遗传屏障并打开内源基因进行细胞类型转换。
       过往研究主要集中在转录因子和生化因子在细胞表型转换中的作用，但对生物物理因子的影响知之甚少。细胞在不同时间尺度上（从几秒到几天）经历机械刺激，可能启动力化学信号传导、细胞骨架重组和染色质重构。

       加州大学洛杉矶分校生物工程系李松教授课题组发现瞬时核变形引发表观遗传状态并促进细胞重编程。

       该研究报道了悬浮细胞在通过一个狭窄的微流控通道时细胞核会经历一次快速的挤压，这一可逆的细胞核形变过程可以显著降低组蛋白H3K9和DNA的甲基化水平，继而提高染色质可及性，最终促进成纤维细胞向神经元细胞的重编程效率。
       在这项研究中，李松教授团队通过微制造技术构建了一套具有宽度为7μm的微通道阵列的微流控器件，并让转染了神经元相关转录因子（Brn2、Ascl1、Mytl1）的悬浮成纤维细胞在20μL/min的流速下通过微通道。研究发现，细胞核受到挤压的成纤维细胞其向神经元细胞直接重编程的效率与对照组相比提高了8倍。
       通过对细胞表观遗传状态的探索发现，细胞受到瞬时挤压后的24小时内，组蛋白H3K9和DNA的甲基化水平均显著性下降。同时，力学诱导的H3K9me3和5m-C下降与通过抑制剂联合处理细胞24小时后的下降水平基本一致。此外，通过与加州大学圣地亚哥分校（UCSD）王英晓教授合作，借助活细胞FRET技术实时观测H3K9me3水平发现，在成纤维细胞进入微通道1分钟内，H3K9me3水平下降显著。
       为进一步推进上述微流控器件的实际应用，李松教授团队设计了一款高通量的微流控芯片，其在短时间内可以实现百万数量级细胞的力学刺激。此外，这一微流控器件不仅可以促进成纤维细胞向神经元细胞重编程，也可以并不限于促进成纤维细胞向多潜能干细胞（iPSCs）重编程，以及巨噬细胞向神经元细胞重编程。
       该研究揭示了细胞核的力学变形会影响染色质组织形式并诱导更开放的染色质结构，可以广泛运用于基因编辑领域。