I 简介

立沃生物科技是一家专注于原代肝细胞分离、冻存与再生的国家高新技术企业。大鼠原代肝细胞分离自SPF级大鼠，细胞纯度高（>95%），经过多种测试，复苏后细胞活力高、贴壁能力强、极化（分化）形态明显，可广泛应用于基础生命科学研究以及药物研发中。

II  试剂与材料

-大鼠原代肝细胞（Cat# LV-PRatH001）            

-复苏培养基（Cat#LV-Rec001）

-纯化培养基（如需要，随细胞赠送）                      

-铺板培养基（贴壁肝细胞细胞，Cat#LV-WEP005）

-维持培养基（贴壁肝细胞细胞，Cat#LV-WEM005）                   

-胶原包被板（贴壁肝细胞细胞，Cat#LV-Coated）

-无菌15ml离心管                                

-一次性移液管

-宽口移液枪头（普通移液枪头剪去尖头，再灭菌使用）

-移液枪

-恒温水浴锅（37℃预热，请用温度计校准温度）                       

-冷冻水平离心机（带水平转子，可离15ml离心管）

-生物安全柜                                    

-37℃/5%CO₂培养箱

-75%酒精

III 悬浮细胞的复苏

• 生物安全柜中，将10ml复苏培养基加入到15ml离心管中，37℃恒温水浴锅预热20min，然后转移到生物安全柜中；铺板培养基37℃预热。
• 将冻存的肝细胞从冷藏位置迅速转移至37℃恒温水浴锅中，尽可能多的浸入37℃水中，顺时针水平摇动，但必须确保冻存管管盖保持在水面以上。
• 解冻冻存管约90 ~120s，至冻存管中只有小块碎冰漂浮即可。
• 用75%酒精消毒冻存管，并将其转移到生物安全柜。
• 用宽口枪头将细胞吸出，并以滴加方式转移至含已预热的复苏培养基的离心管中（注意：冻存管与枪头上残留细胞，可吸取1ml复苏培养基清洗冻存管与枪头并将其混入离心管的培养基中），轻微上下

颠倒离心管2-3次混匀。

• 用台盼蓝排除法测定肝细胞的活力、活细胞数。按照实验要求加入药物，测定药物代谢情况。
• 如细胞密度达不到要求或者担心冻存液对代谢酶活性有影响，可直接低速离心（离心对细胞活力有一定的影响），50g，常温离心5min。去上清，用药物代谢专用培养基（客户自备）重悬，用台盼蓝排除法测定肝细胞的活力、活细胞数。按照实验要求加入药物，测定药物代谢情况。

IV 贴壁细胞的复苏与铺板

• 生物安全柜中，将10ml复苏培养基加入到15ml离心管中，37℃恒温水浴锅预热20min，然后转移到生物安全柜中；纯化培养基常温放置（如需要）；铺板培养基37℃预热。
• 将冻存的肝细胞从冷藏位置迅速转移至37℃恒温水浴锅中，尽可能多的浸入37℃水中，顺时针水平摇动，但必须确保冻存管管盖保持在水面以上。
• 解冻冻存管约90 ~120s，至冻存管中只有小块碎冰漂浮即可。
• 用75%酒精消毒冻存管，并将其转移到生物安全柜。
• 用宽口枪头将细胞吸出，并以滴加方式转移至含已预热的复苏培养基的离心管中（注意：冻存管与枪头上残留细胞，可吸取1ml复苏培养基清洗冻存管与枪头并将其混入离心管的培养基中），轻微上下颠倒离心管2-3次混匀。
• 可直接低速离心，50g，常温离心5min。去上清，用4ml铺板培养基重悬，用台盼蓝排除法测定肝细胞的活力，若活力>70%，可直接铺板，反之则需进行纯化。
• 细胞纯化：将细胞悬液离心，50g，常温离心5min，去上清，用2ml纯化培养基（免费提供）重悬细胞，然后沿管壁向离心管小心加入1ml铺板培养基（切勿扰动下层，加入后可见明显分层）；800g，4℃离心20min（升速为9，降速为1），离心后，吸取纯化培养基和铺板培养基之间的浑浊带（活细胞层），转移到新的15mL离心管中，加入2倍体积的铺板培养基，混匀后，50g，常温离心5min，去上清，用4ml铺板培养基重悬细胞。
• 用台盼蓝排除法测定肝细胞的活力和细胞总量，建议检测3次，求取平均值。
• 按活细胞数1.510⁵cells/cm²接种到胶原包被培养板中，摇匀，置37℃/ 5%CO₂培养箱中培养。推荐步骤：接种后4小时，可对细胞轻轻换液（此时细胞处于半贴壁状态），加入预热的新鲜铺板培养基，以提升细胞状态。

V 肝细胞维持培养

• 培养过夜，细胞已经完全贴壁，移除铺板培养基，加入维持培养基，每2天换液1次。
• 大鼠原代肝细胞具有有限的增殖能力，具有明显的接触抑制特性，且肝细胞的分化特性以及培养时间依赖于高密度的细胞培养。
• 大鼠原代肝细胞体外维持时间相对较短，建议实验在铺板后3天内完成，最长不超过5天，不建议对大鼠肝细胞进行传代培养。